文章信息
- 周晓丽, 王琳, 张艺磊, 张丽娟, 马银丽, 巨晓棠, 吉艳芝
- ZHOU Xiao-li, WANG Lin, ZHANG Yi-lei, ZHANG Li-juan, MA Yin-li, JU Xiao-tang, JI Yan-zhi
- 硝态氮源及碳源有效性对土壤N2O和CO2排放的影响
- Effect of the Availability of Nitrate Nitrogen and Carbon Source on N2O and CO2 Emission from Soil
- 农业资源与环境学报, 2016, 33(2): 170-175
- Journal of Agricultural Resources and Environment, 2016, 33(2): 170-175
- http://dx.doi.org/10.13254/j.jare.2015.0206
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文章历史
- 收稿日期: 2015-08-18
2. 河北香河环保产业园区, 河北 廊坊 065400;
3. 中国农业大学资源与环境学院, 北京 100193
2. Environmental Protection Industry Park of Hebei Xianghe, Langfang 065400, China;
3. College of Resources and Environment Sciences, China Agricultural University, Beijing 100193, China
N2O和CO2是重要的温室气体,N2O单分子增温潜势是N2O的298倍,并破坏大气平流层中的臭氧层[1, 2, 3],影响生态环境和人类健康。农田生态系统对大气中N2O和CO2有显著的影响[4],土壤向大气排放的N2O占全球N2O排放总量的84%[5]。2009年,中国农业总计排放温室气体158 577.3万t N2O当量,其中,N2O占总排放的52%,CO2占总排放的23%[6]。我国是农业大国,为了提高作物产量而片面地追施化肥,使得氮肥施用量逐年增加,施肥显著促进农田N2O及CO2的排放[7],这不仅降低氮素利用率,导致经济效益下降,还成为生态环境恶化的一个重要原因[8]。因此,为了提高氮肥利用率,减少N2O和CO2排放,研究土壤N2O和CO2排放机制及影响因素有重要意义。
外源硝态氮的添加可促进黑土和潮土N2O排放通量[9]。李英臣等[10]认为,随氮输入量增加,沼泽湿地土壤N2O排放呈现先增加后降低的趋势,适当的氮输入促进土壤N2O排放,过量的氮输入则对土壤N2O排放有一定的抑制作用。黄耀等[11]研究表明,N2O的排放随土壤有机碳含量的增加而减少,有机碳含量低的土壤N2O排放较高。吴浩浩等[12]研究表明,外源碳氮添加和土壤湿润程度影响着土壤中氮素转换、可溶性有机碳含量以及微生物量,进而影响土壤N2O排放。张旭博等[13]研究表明,添加秸秆类有机物料后,土壤CO2的排放速率在培养初期较高。
以往有关N2O和CO2排放影响因素研究对确定减排措施具有一定的指导意义,但是N2O排放具有高度的时空变异性,土壤中碳氮的生物有效性对N2O和CO2排放有重要作用,且华北地区是我国重要的商品粮基地之一,粮食产量占全国总产量的13%[14]。因此本研究以华北平原典型农田土壤为对象,运用静态培养系统,通过NO3--N与6种不同碳源结合,探明N2O、CO2随时间排放通量变化及土壤NO3-、NH4+含量变化特征,研究不同碳源对N2O和CO2排放量的有效性,为降低华北平原农田土壤N2O、CO2排放提供理论依据。
1 材料与方法 1.1 供试材料试验于2011年3—5月在中国农业大学进行,供试材料选用中国农业大学曲周实验站长期定位试验优化处理土壤,冬小麦/夏玉米一年两熟优化管理种植体系。冬小麦季氮肥施用量为139 kg N·hm-2,夏玉米季氮肥施用量为185 kg N·hm-2。采取秸秆还田、优化施肥、节水灌溉。
曲周实验站位于河北省邯郸市东北部(36N,114E),属于暖温带半干旱季风气候区,光、热、水等气候资源比较丰富,海拔36 m,冬小麦/夏玉米一年两熟优化管理种植体系。年降水量542.8 mm左右,年际变化率大(23.4%),7、8月份降水量约占全年降水量60%,年蒸发量1 800 mm。供试土壤为盐化潮土,表层土壤(0~20 cm)质地为轻壤土,砂粒、粉粒和粘粒含量分别为39.34%、58.25%和2.41%,容重 1.30 g·cm-3,有机碳含量为0.95%,总氮含量为0.07%,pH值为7.72,有效钾72.7 mg·kg-1,有效磷(Available P-Olsen)34.4 mg·kg-1,C/N为12.1。
1.2 试验设计在设定环境因素(温度20 ℃,容重1.30 g·cm-3)条件下,采用静态培养系统进行室内模拟试验。采用硝态氮与不同碳源结合,共设6个碳源,分别为:葡萄糖、果胶、淀粉、纤维素、木质素、秸秆(小麦)。试验共设8个处理,每个处理3次重复,随机排列,具体施肥及水分控制情况见表 1。
将预培养土壤与不同添加物充分混匀分两次装入广口瓶,并压实至田间容重。装瓶完毕之后,继续向瓶中土层喷洒蒸馏水,调节土壤含水量为田间最大持水量的70%,盖上Parafilm膜(透气不透水),将广口瓶裹上黑色塑料袋(避光),随机放置在20 ℃的培养箱中培养15 d。在培养期间补加蒸馏水以保持土壤含水量一致[15]。
1.3 样品采集及测定 1.3.1 N2O和CO2采样与测定在培养的1、2、3、5、8、12、15 d采集气体样品,采集时段为每日上午7:30—8:00,采气前揭开Parafilm 膜,充分通气5 min,然后盖上橡皮塞,以此为t0时刻,用20 mL医用一次性注射器连续抽取0、10、20 min的3针气样,每针20 mL,同时记录采集时间。12 h内利用气相色谱(型号Agilent GC6820)测定采集的气样的N2O、CO2浓度。
1.3.2 土壤铵态氮、硝态氮测定在试验开始、初期及试验结束,破坏性采集新鲜土壤样品,通过2 mm筛备用。称取过筛后的新鲜土壤12 g,用50 mL 1 mol·L-1优级纯KCl,按1∶5土水比提取无机氮。过滤后的滤液用三通道流动分析仪(TRRACS 2000)测定溶液铵态氮和硝态氮的含量。
1.3.3 土壤pH值测定在试验开始、初期及试验结束采集土壤样品,风干并通过1 mm孔径筛,采用水土比为1∶1,称取风干土样10.0 g于25 mL烧杯中,加入去除CO2的蒸馏水10 mL,搅拌1 min,静置30 min后用校正的pH计测定悬液的pH值。
1.4 数据计算与统计分析[16] 1.4.1 N2O 通量计算公式


数据采用Excel 2003、SPSS 16.0进行方差分析和统计分析,最小显著差异法(LSD)作多重比较。
2 结果与分析 2.1 土壤N2O排放通量N2O排放通量随时间变化特征见图 1。CK和只添加氮源土壤的N2O排放量很低;NO3--N和添加不同碳源土壤N2O在培养后期还有排放,N2O排放持续时间较长。NO3-+glu、NO3-+pec的N2O排放量在第1 d就达到最大值,分别为990.67、1 383.42 μg N·kg-1·d-1,之后迅速降低。NO3-+sta的N2O排放量先降低后增加,在培养后期N2O排放量最高;NO3-+str的N2O排放持续时间最长,并处于较低水平,但始终高于CK;NO3-+lig的N2O排放在初期相对较高,但降低速率很快,培养后期基本没有排放;NO3-+cel在培养前期低于CK,后期高于CK,整个培养期间N2O排放量低于CK。综上可见,添加纤维素会抑制N2O排放,添加其余碳源会促进N2O排放。
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图 1 N2O排放通量随时间变化特征 Figure 1 Temporal variations of N2O emission |
CK和只添加氮源土壤的CO2排放量很低,添加不同碳源土壤CO2排放量均高于CK(图 2);NO3-+glu和NO3-+pec的CO2排放量分别在培养第1 d和2 d就达到最大值,为370.13、214.02 mg C·kg-1·d-1,之后逐渐降低;NO3-+sta的CO2排放量持续增加,培养后期CO2排放量相对较高;NO3-+cel的CO2排放量先增加后降低,在培养第5 d达到最大值,培养末期处于较高水平为97.25 mg C·kg-1·d-1;NO3-+lig的CO2排放量一直处于低水平,在培养第8、11 d稍低于CK;NO3-+str的CO2排放量先增加后降低,排放量相对较高。可见,添加碳源会促进CO2排放。
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图 2 CO2排放通量随时间变化特征 Figure 2 Temporal variations of CO2 emission |
NO3-和添加不同碳源的CO2累积排放通量高于CK与只添加氮源土壤(图 3);CO2累积排放通量呈现出葡萄糖>果胶>秸秆>纤维素>淀粉>木质素的趋势。
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图 3 CO2累积排放通量随时间变化特征 Figure 3 Temporal variations of CO2 accumulated emission |
培养过程中土壤NO3-含量变化如图 4所示。可以看出,培养第0 d,NO3-和添加不同碳源土壤NO3-含量均高于CK;CK和NO3-+sta的NO3-含量低于60 mg·kg-1,其余处理NO3-含量为75~80 mg·kg-1;培养第3 d,NO3-+cel土壤的NO3-含量增加至101.85 mg·kg-1,只添加NO3-土壤的NO3-含量增加到89.09 mg·kg-1,其余处理NO3-含量逐渐降低,CK处于最低水平;培养结束(15 d),CK土壤NO3-含量与第3 d相比没有明显变化仍处于最低水平,其余处理NO3-含量均有少量减少,单施NO3-土壤的NO3-含量低于NO3-+cel,高于其余添加不同碳源土壤。整个培养期间,NH4+含量较低,在第0 d和第3 d土壤中没有检测到NH4+,仅在第15 d有少量NH4+。可见,与只添加氮源相比,添加纤维素增加了土壤NO3-含量,添加其余碳源减少了土壤NO3-含量。
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图 4 NO3-含量随时间变化特征 Figure 4 Content of NO3- in cultivation |
培养初始至结束,土壤NO3--N含量与N2O排放极显著相关;培养第3~15 d,NH4+-N含量与N2O排放显著负相关(表 2)。
培养初始、第3 d及培养结束时土壤pH值动态如图 5所示。可以看出CK处理土壤pH值在培养过程中没有明显变化;NO3-+sta 、NO3-+cel处理的土壤pH逐渐升高;NO3-+lig、NO3-+str处理的土壤pH值逐渐降低;NO3-+glu、NO3-+pec处理的土壤pH值在培养第3 d升高,到培养结束时降低。分析发现,土壤pH值变化与N2O排放呈与培养初期负相关、之后正相关趋势,但相关性不显著。
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图 5 土壤pH 值随时间的变化 Figure 5 Temporal variations of pH value for each treatment |
有研究表明,限制土壤反硝化的一个重要因子是土壤可溶性有机碳的有效性,土壤微生物群体大小在很大程度上依赖于土壤有效碳含量,在土壤中反硝化微生物与其他异养微生物争夺土壤中的有效碳,因此土壤反硝化量的大小与碳含量相关[17]。相关研究表明,添加碳源后可以促进N2O的排放,而过高的C/N比则会降低反硝化氮损失,促进氮的生物固定[18]。农田土壤中绿肥、有机肥的施用以及秸秆还田等都能够增加土壤碳的有效性,但对土壤 N2O排放的影响,则需要根据具体的土壤 C/N 和土壤环境而定[19]。本研究以NO3-为氮源,添加6种不同碳源,结果表明,以纤维素为碳源时,抑制了N2O的排放,促进了N2O排放,因为纤维素具有不溶性的刚性结构,自然条件下分解缓慢[20],不易被微生物利用;添加其他碳源时,促进了N2O和CO2排放,葡萄糖是单糖,加入葡萄糖后,土壤微生物活性增强,能促进N2O和CO2排放[21];果胶是一种水溶性膳食纤维[22],微生物容易利用;淀粉是葡萄糖的高聚体,完全水解为葡萄糖;木质素水溶性能良好,化学稳定性高[23];秸秆还田能显著增加农田CO2排放,排放总量较同氮素水平下无秸秆还田处理相比增加18%[24, 25]。
倪玉雪等[26]研究表明,与只添加氮源的处理相比,碳氮配施的外源添加方式均促进土壤N2O、CO2排放。叶丹丹等[27]研究表明土壤无机氮含量与N2O排放通量基本呈显著正相关关系。Wang等[28]研究表明,土壤中NO3--N含量通过反硝化作用影响N2O排放;土壤pH通过影响硝化和反硝化细菌活性来影响N2O排放。土壤的硝化和反硝化作用都会产生N2O[29],添加硝态氮处理N2O和CO2排放量均高于不施氮处理,且前期排放量较高,表明添加硝态氮可促进N2O和CO2排放[7]。本研究表明,添加纤维素增加了土壤NO3--N含量,而添加其余碳源减少了土壤NO3--N含量,这可能是由于碳源有效性、C/N不同对土壤NO3--N含量有不同影响[19]。培养期间NO3--N含量降低,NH4+-N含量略有增加,表明试验过程中发生反硝化作用,促进氮素转化。试验过程中,N2O排放表现出与土壤pH相关性不显著,可能是因为土壤pH变化不大,不足以影响N2O排放。
4 结论(1)以纤维素为碳源与硝态氮配施抑制了土壤N2O排放,促进了CO2排放;添加其他碳源可明显促进N2O和CO2排放;CO2累积排放量顺序为:葡萄糖>果胶>秸秆>纤维素>淀粉>木质素。
(2)与其他碳源相比,添加纤维素增加了土壤中NO3--N含量。
(3)土壤NO3--N含量与N2O排放量呈极显著正相关,土壤pH值与N2O排放相关性不显著。
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